硫代葡萄糖苷

硫代葡萄糖苷是許多辛辣植物的天然成分,如芥末捲心菜辣根。 這些植物的刺激性是由於當植物材料被咀嚼,切割或以其他方式損壞時由芥子油苷產生的芥子油。 這些天然化學物質最有可能有助於植物防禦病蟲害,並賦予十字花科蔬菜特有的苦味。[1]

硫代葡萄糖苷,R為側鏈基團

含硫代葡萄糖苷的植物 編輯

硫代葡萄糖苷是幾乎所有蕓苔屬植物的次生代謝產物,例如蕓苔目中有重要經濟用途的十字花科山柑科番木瓜科。 在蕓苔屬植物之外,非洲核果木科中的Drypetes屬[2]和Putranjiva屬是唯一已知含有硫代葡萄糖苷的屬。 硫代葡萄糖苷存在於各種可食用植物中,例如捲心菜類(白捲心菜,大白菜西蘭花),西洋菜辣根刺山柑蘿蔔,其中分解產物通常貢獻了它們的獨特味道。 硫代葡萄糖苷也存在於這些植物的種子中。[1]

化學 編輯

硫代葡萄糖苷衍生自葡萄糖氨基酸,構成一類含有的天然有機化合物。它們是水溶性陰離子,屬於葡萄糖苷。每個硫代葡萄糖苷含有中心碳原子,其通過硫原子與硫代葡萄糖基團結合,並通過氮原子與硫酸基團結合(形成硫酸化醛肟)。另外,中心碳與側基結合;不同的硫代葡萄糖苷具有不同的側基,並且側基的變化是造成這些植物化合物的生物活性變化的原因。硫代葡萄糖苷的半系統命名由該側鏈的化學名稱和「硫代葡萄糖苷」組成,例如烯丙基芥子油苷與烯丙基硫代葡萄糖苷。[3] 硫代葡萄糖苷化學的實質是硫代葡萄糖苷在黑芥子酶酶水解硫代葡萄糖苷鍵後轉化為異硫氰酸酯(「芥子油」)的能力。[3]

一些硫代葡萄糖苷:[3]

  • 烯丙基芥子油苷(sinigrin)是異硫氰酸烯丙酯的前體
  • 芐基芥子油苷(Glucotropaeolin)是異硫氰酸芐酯的前體
  • 苯乙基芥子油苷(Gluconasturtiin)是苯乙基異硫氰酸酯的前體
  • (R)-4-(甲基亞磺酰基)丁基芥子油苷(Glucoraphanin)是(R)-4-(甲基亞磺酰基)丁基異硫氰酸酯(蘿蔔硫素)的前體
  • (R)-2-羥基丁-3-烯基芥子油苷(progoitrin)可能是(S)-2-羥基丁-3-烯基異硫氰酸酯的前體,預計它是不穩定的,並會立即環化形成(S)-5-乙烯基噁唑烷-2-硫酮(甲殼素)

生物化學 編輯

來自少數氨基酸的天然多樣性 編輯

已知大約132種不同的硫代葡萄糖苷在植物中天然存在。 它們由某些氨基酸合成,如脂肪族硫代葡萄糖苷,主要來源於蛋氨酸,其餘還有丙氨酸亮氨酸異亮氨酸纈氨酸。 (大多數硫代葡萄糖苷實際上衍生自這些氨基酸的鏈延長同源物,例如,蘿蔔硫苷衍生自二高蛋氨酸,其是甲硫氨酸鏈延長兩次)。芳香硫代葡萄糖苷包括衍生自色氨酸的吲哚,例如來自色氨酸的芥子油苷,還有的來自苯丙氨酸,其鏈延長的同系物高苯丙氨酸,和來自酪氨酸的sinalbin。[4]

酶激活 編輯

在有水的條件下,植物中的黑芥子酶會從硫代葡萄糖苷中切除葡萄糖基團。[5] 然後剩餘的分子迅速轉化為異硫氰酸酯硫氰酸鹽;這些是植物自我防禦的活性物質。 硫代葡萄糖苷也稱為芥子油糖苷,由於此反應的標準產物是異硫氰酸酯(芥子油); 另外兩種產物主要於含有專門改變反應結果的植物蛋白質的條件下產生。[6]

 
芥子油糖苷1被轉化為異硫氰酸酯'3'('芥子油)。 葡萄糖2也被釋放,圖中僅顯示β形式。R = 烯丙基, , 2-苯乙基等。[來源請求]

在上文說明的化學反應中,與實際相比,圖左側的紅色彎曲箭頭被簡化了,因為未顯示酶黑芥子酶的作用。 然而,所示的機理基本上與酶催化反應一致。

相比之下,如圖中右側的紅色彎曲箭頭所示,這種產生異硫氰酸酯的原子重排,被認為是非酶促的。 這種類型的重排可以被命名為Lossen-reaarrangement或類似Lossen的重排,因為該名稱被首先用來指導致有機異氰酸酯的類似反應(R-N = C = O)。[來源請求]

為了防止對植物本身的損害,黑芥子酶和硫代葡萄糖苷被儲存在細胞的不同隔室中或組織中的不同細胞中,並且僅(主要)在遭到物理損傷的條件下聚集在一起。[來源請求]

生物效應 編輯

人類和其他哺乳動物 編輯

益處 編輯

食用較多十字花科蔬菜的人群似乎癌症發病率、老年痴呆率都較低,硫苷及異氰酸鹽分解產物可能為有效成分之一。[7][8][9]

硫苷及分解產物在動物和細胞模型中有抗腫瘤、抗氧化、抗痴呆等作用,但直接加入人類飲食中的益處尚不明確。[10]

毒性 編輯

如果硫代葡萄糖苷的濃度高於一種動物可接受的濃度,那麼含硫代葡萄糖苷的作物作為動物的主要食物來源會產生負面影響。硫苷的分解產物中,異氰酸鹽造成苦味降低攝食,腈基物質可能影響健康,[11]硫氰酸及其酯已被證實有抑制碘吸收的抗甲狀腺素作用,會造成甲狀腺腫大[12] 然而,即使在同一屬(例如開羅刺鼠金刺鼠)中,對硫代葡萄糖苷的植物耐受水平也不同。[13]

菜籽油壓榨剩下的油渣餅富集了菜籽中大部分的硫苷,如果作為飼料的主要成分,就可能超過可接受濃度,造成上述的不良反應。[14][15]飼料可以經過處理,洗去硫苷。[16]培育低硫苷菜籽可以提高油渣餅作為飼料的經濟價值,是油菜育種的重要方向之一。[17]

十字花科蔬菜在不缺碘的人類無抗甲狀腺作用。曾有研究召集志願者連續四周每天食用150克抱子甘藍,未造成甲狀腺功能異常。在缺碘地區,食用大量十字花科蔬菜可能提高甲狀腺癌風險,但在碘攝入正常地區則無此現象。[18]

味覺和飲食行為 編輯

其中,硫代葡萄糖苷黑芥子苷被證明是導致烹熟的花椰菜抱子甘藍的苦味的原因。[1][19] 硫代葡萄糖苷可能會改變動物的飲食行為。[20]

昆蟲 編輯

硫代葡萄糖苷及其產品對許多昆蟲具有負面影響,其原因是威懾和毒性的結合。為了在農學背景下應用這一原理,一些硫代葡萄糖苷衍生的產品可以作為拒食劑,即天然殺蟲劑[21] 相比之下,十字花科植物的害蟲小菜蛾可能會識別出硫代葡萄糖苷的存在,從而可以識別出適當的寄主植物。[22]實際上,在含硫代葡萄糖苷的植物上有一種特有的,專門的昆蟲,包括蝴蝶,如歐洲粉蝶菜粉蝶紅襟粉蝶,還有某些蚜蟲,飛蛾,如南方粘蟲,鋸蠅和跳蚤甲蟲。[來源請求]例如,歐洲粉蝶將卵產在這些含硫代葡萄糖苷的植物上,幼蟲即使含有高水平的硫代葡萄糖苷也能存活,並食用含有硫代葡萄糖苷的植物材料。[來源請求]菜粉蝶和都紅襟粉蝶具有一種腈特異性蛋白質,它將硫代葡萄糖苷水解轉向腈類而不是反應性異硫氰酸酯。[23] 相比之下,小菜蛾具有完全不同的蛋白質,硫代葡萄糖苷硫酸酯酶,它會硫酸化硫代葡萄糖苷,從而使它們不適合黑芥子酶降解為有毒產物。[24]

其他種類的昆蟲(特定的鋸蠅和蚜蟲)螯合硫代葡萄糖苷。[25]在一種特殊的蚜蟲中,它的肌肉組織中被發現有一種獨特的動物黑芥子酶,導致蚜蟲組織破壞時螯合硫代葡萄糖苷的降解,但鋸蠅中沒有。[26] 這種針對同一種植物化學品的多樣化生物化學解決方案在植物 - 昆蟲關係的演變中起著關鍵作用。[27]

參考文獻 編輯

  1. ^ 1.0 1.1 1.2 Ishida, M; Hara, M; Fukino, N; Kakizaki, T; Morimitsu, Y. Glucosinolate metabolism, functionality and breeding for the improvement of Brassicaceae vegetables. Breeding Science. 2014, 64 (1): 48–59. PMC 4031110 . PMID 24987290. doi:10.1270/jsbbs.64.48. 
  2. ^ James E. Rodman; Kenneth G. Karol; Robert A. Price; Kenneth J. Sytsma. Molecules, Morphology, and Dahlgren's Expanded Order Capparales. Systematic Botany. 1996, 21 (3): 289–307. JSTOR 2419660. doi:10.2307/2419660. 
  3. ^ 3.0 3.1 3.2 Agerbirk N, Olsen CE. Glucosinolate structures in evolution. Phytochemistry. 2012, 77: 16–45. PMID 22405332. doi:10.1016/j.phytochem.2012.02.005. 
  4. ^ Niels Agerbirk; Carl Erik Olsen. Glucosinolate structures in evolution. Phytochemistry. 2012, 77: 16–45. PMID 22405332. doi:10.1016/j.phytochem.2012.02.005. 
  5. ^ Bongoni, R; Verkerk, R; Steenbekkers, B; Dekker, M; Stieger, M. Evaluation of Different Cooking Conditions on Broccoli (Brassica oleracea var. italica) to Improve the Nutritional Value and Consumer Acceptance. Plant Foods for Human Nutrition. 2014, 69 (3): 228–234. PMID 24853375. doi:10.1007/s11130-014-0420-2. 
  6. ^ Burow, M; Bergner, A; Gershenzon, J; Wittstock, U. Glucosinolate hydrolysis in Lepidium sativum--identification of the thiocyanate-forming protein. Plant Molecular Biology. 2007, 63 (1): 49–61. PMID 17139450. doi:10.1007/s11103-006-9071-5. 
  7. ^ Abbaoui, B; Lucas, CR; Riedl, KM; Clinton, SK; Mortazavi, A. Cruciferous Vegetables, Isothiocyanates, and Bladder Cancer Prevention.. Molecular nutrition & food research. 2018-09, 62 (18): e1800079. PMID 30079608. doi:10.1002/mnfr.201800079. 
  8. ^ Loef, M.; Walach, H. Fruit, vegetables and prevention of cognitive decline or dementia: a systematic review of cohort studies.. Journal of Nutrition, Health & Aging. 2012, 16 (7): 626–630. PMID 22836704. doi:10.1007/s12603-012-0097-x. 
  9. ^ Tse, G; Eslick, G.D. Cruciferous vegetables and risk of colorectal neoplasms: a systematic review and meta-analysis.. Nutrition and Cancer. 2014, 66 (1): 128–139. PMID 24341734. doi:10.1080/01635581.2014.852686. 
  10. ^ Connolly, EL; Sim, M; Travica, N; Marx, W; Beasy, G; Lynch, GS; Bondonno, CP; Lewis, JR; Hodgson, JM; Blekkenhorst, LC. Glucosinolates From Cruciferous Vegetables and Their Potential Role in Chronic Disease: Investigating the Preclinical and Clinical Evidence.. Frontiers in pharmacology. 2021, 12: 767975. PMID 34764875. doi:10.3389/fphar.2021.767975. 
  11. ^ Tripathi, M.K.; Mishra, A.S. Glucosinolates in animal nutrition: A review. Animal Feed Science and Technology. 2007-01, 132 (1-2): 1–27. doi:10.1016/j.anifeedsci.2006.03.003. 
  12. ^ Plants Poisonous to Livestock: Glucosinolates (Goitrogenic Glycosides). Cornell University, Department of Animal Science. 10 September 2015 [16 August 2018]. (原始內容存檔於2015-08-10). 
  13. ^ Samuni Blank, M; Arad, Z; Dearing, MD; Gerchman, Y; Karasov, WH; Izhaki, I. Friend or foe? Disparate plant–animal interactions of two congeneric rodents. Evolutionary Ecology. 2013, 27 (6): 1069–1080. doi:10.1007/s10682-013-9655-x. 
  14. ^ European Food Safety Authority (EFSA) (2008) Glucosinolates as undesirable substances in animal feed ‐ scientific opinion of the panel on contaminants in the food chain. EFSA J. 6, 590.
  15. ^ Lee, JW; Kim, IH; Woyengo, TA. Toxicity of Canola-Derived Glucosinolate Degradation Products in Pigs-A Review.. Animals : an open access journal from MDPI. 2020-12-09, 10 (12). PMID 33316893. doi:10.3390/ani10122337. 
  16. ^ Shahidi, F.; Naczk, M. Canola and Rapeseed. Removal of Glucosinolates and Other Antinutrients from Canola and Rapeseed by Methanol/Ammonia Processing. 1990: 291–306. doi:10.1007/978-1-4615-3912-4_17. 
  17. ^ Jhingan, Srijan; Harloff, Hans-Joachim; Abbadi, Amine; Welsch, Claudia; Blümel, Martina; Tasdemir, Deniz; Jung, Christian. Reduced glucosinolate content in oilseed rape (Brassica napus L.) by random mutagenesis of BnMYB28 and BnCYP79F1 genes. Scientific Reports. 2023-02-09, 13 (1). doi:10.1038/s41598-023-28661-6. 
  18. ^ Cruciferous Vegetables. Linus Pauling Institute. 2014-04-28 [2023-08-27]. (原始內容存檔於2023-09-13) (英語). However, increased exposure to thiocyanate ions from cruciferous vegetable consumption or, more commonly, from cigarette smoking, does not appear to increase the risk of hypothyroidism unless accompanied by iodine deficiency. One study in humans found that the consumption of 150 g/day (5 oz/day) of cooked Brussels sprouts for four weeks had no adverse effects on thyroid function (56). Similarly, consumption of high amounts of cruciferous vegetables has been associated with increased thyroid cancer risk only in iodine-deficient areas (57). 
  19. ^ Van Doorn, Hans E; Van Der Kruk, Gert C; Van Holst, Gerrit-Jan; Raaijmakers-Ruijs, Natasja C M E; Postma, Erik; Groeneweg, Bas; Jongen, Wim H F. The glucosinolates sinigrin and progoitrin are important determinants for taste preference and bitterness of Brussels sprouts. Journal of the Science of Food and Agriculture. 1998, 78: 30–38. doi:10.1002/(SICI)1097-0010(199809)78:1<30::AID-JSFA79>3.0.CO;2-N. 
  20. ^ Samuni-Blank, M; Izhaki, I; Dearing, MD; Gerchman, Y; Trabelcy, B; Lotan, A; Karasov, WH; Arad, Z (2012). Intraspecific directed deterrence by the mustard oil bomb in a desert plant. Current Biology. 22:1-3.
  21. ^ Furlan, Lorenzo; Bonetto, Christian; Finotto, Andrea; Lazzeri, Luca; Malaguti, Lorena; Patalano, Giampiero; Parker, William. The efficacy of biofumigant meals and plants to control wireworm populations. Industrial Crops and Products. 2010, 31 (2): 245–254. doi:10.1016/j.indcrop.2009.10.012. 
  22. ^ Badenes-Pérez, Francisco Rubén; Reichelt, Michael; Gershenzon, Jonathan; Heckel, David G. Phylloplane location of glucosinolates in Barbarea spp. (Brassicaceae) and misleading assessment of host suitability by a specialist herbivore. New Phytologist. 2011, 189 (2): 549–556. ISSN 0028-646X. PMID 21029103. doi:10.1111/j.1469-8137.2010.03486.x. 
  23. ^ Wittstock, U; Agerbirk, N; Stauber, EJ; Olsen, CE; Hippler, M; Mitchell-Olds, T; Gershenzon, J; Vogel, H. Successful herbivore attack due to metabolic diversion of a plant chemical defense. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2004, 101 (14): 4859–64. Bibcode:2004PNAS..101.4859W. PMC 387339 . PMID 15051878. doi:10.1073/pnas.0308007101. 
  24. ^ Ratzka, A.; Vogel, H.; Kliebenstein, D. J.; Mitchell-Olds, T.; Kroymann, J. Disarming the mustard oil bomb. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002, 99 (17): 11223–11228. Bibcode:2002PNAS...9911223R. PMC 123237 . PMID 12161563. doi:10.1073/pnas.172112899. 
  25. ^ Müller, C; Agerbirk, N; Olsen, CE; Boevé, JL; Schaffner, U; Brakefield, PM. Sequestration of host plant glucosinolates in the defensive hemolymph of the sawfly Athalia rosae. Journal of Chemical Ecology. 2001, 27 (12): 2505–16. PMID 11789955. doi:10.1023/A:1013631616141. 
  26. ^ Bridges, M.; Jones, A. M. E.; Bones, A. M.; Hodgson, C.; Cole, R.; Bartlet, E.; Wallsgrove, R.; Karapapa, V. K.; Watts, N.; Rossiter, J. T. Spatial organization of the glucosinolate-myrosinase system in brassica specialist aphids is similar to that of the host plant. Proceedings of the Royal Society B. 2002, 269 (1487): 187–191. PMC 1690872 . PMID 11798435. doi:10.1098/rspb.2001.1861. 
  27. ^ Wheat, C. W.; Vogel, H.; Wittstock, U.; Braby, M. F.; Underwood, D.; Mitchell-Olds, T. The genetic basis of a plant insect coevolutionary key innovation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2007, 104 (51): 20427–31. Bibcode:2007PNAS..10420427W. PMC 2154447 . PMID 18077380. doi:10.1073/pnas.0706229104. 

外部連結 編輯